Manchar después de una citología

Manchar después de una citología

Ejemplos de tinciones citológicas

La citología urinaria exfoliativa debe incluirse en el diagnóstico y seguimiento de los carcinomas de vejiga. La tinción según Papanicolaou requiere mucho tiempo y es cara. Por lo tanto, se investigó la precisión de la citología tras la tinción con azul de metileno, el uso de portaobjetos teñidos previamente y la tinción de Papanicolaou. Se tomaron muestras de lavado de orina y vejiga de 77 pacientes con tumores de vejiga histológicamente probados, 152 pacientes tras la resección del tumor y 100 pacientes sin tumor del tracto urinario. Los resultados muestran una precisión comparable de las distintas técnicas de tinción. Los portaobjetos teñidos con azul de metileno y preteñidos no pueden utilizarse para la documentación; por lo tanto, todas las muestras que muestren un tumor o sean sospechosas deben teñirse también según Papanicolaou.

¿Qué es la tinción en citología?

La tinción citológica, que colorea artificialmente las células, puede ayudar a investigadores y médicos en la detección, identificación y diagnóstico de una serie de patologías, como infecciones, enfermedades inflamatorias y cáncer.

¿Por qué es útil teñir una muestra citológica?

Para realizar una tinción citológica, las tinciones revelan las estructuras de las células a examinar, como el núcleo, el citoplasma y los gránulos celulares. Se necesita experiencia para obtener un frotis óptimo, un fino equilibrio entre frotis demasiado gruesos y demasiado finos. Tras la preparación de los frotis, la fijación y la tinción son esenciales.

¿Cuáles son las tinciones más utilizadas en las muestras citológicas?

La tinción universal para las preparaciones citológicas es la tinción de Papanicolaou. La hematoxilina de Harris es la tinción nuclear óptima y la combinación de OG6 y EA50 aporta la sutil gama de tonos verdes, azules y rosas al citoplasma celular.

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Tinción de rutina en el laboratorio de citología

Para procesar casi todos los tipos de muestras de biopsia se utilizan procedimientos y métodos estándar. Estos procedimientos son las formas habituales de preparar una muestra en el laboratorio. También pueden realizarse otros procedimientos, que se describen más adelante, en determinados tipos de muestras (como ganglios linfáticos y médula ósea).

En el caso de las biopsias pequeñas, como la biopsia en sacabocados o la biopsia con aguja gruesa, se suele examinar toda la muestra al microscopio. El tejido se coloca en pequeños recipientes denominados casetes. Los casetes sostienen el tejido de forma segura mientras se procesa. Tras el procesamiento, que puede durar unas horas (pero suele hacerse de un día para otro), la muestra de tejido se introduce en un molde con cera de parafina caliente. La cera se enfría para formar un bloque sólido que protege el tejido.

Este bloque de parafina con el tejido incrustado se corta en láminas muy finas con un instrumento llamado micrótomo. Estos cortes finos de la muestra se colocan en portaobjetos de cristal y se sumergen en una serie de tintes o colorantes para cambiar el color del tejido. El color facilita la observación de las células al microscopio. Para la mayoría de las muestras de biopsia, este procesamiento rutinario es todo lo que se necesita. En este punto (normalmente al día siguiente de la biopsia), el patólogo observa el tejido al microscopio. Este tipo de examen de las muestras sólidas se denomina histología, que es el estudio de las estructuras de las células y los tejidos.

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Fijador utilizado en citología

Una muestra de células de una biopsia, una muestra de citología o una muestra de sangre se trata con anticuerpos especiales. Cada anticuerpo se adhiere sólo a determinados tipos de células que tienen los antígenos que le corresponden. A continuación, las células se pasan por delante de un rayo láser. Si las células tienen ahora esos anticuerpos, el láser hará que emitan una luz que luego se mide y analiza con un ordenador.

La hibridación fluorescente in situ (FISH) es muy parecida a las pruebas citogenéticas. Puede detectar la mayoría de las alteraciones cromosómicas que pueden observarse al microscopio en las pruebas citogenéticas estándar. También puede detectar algunas alteraciones demasiado pequeñas para las pruebas citogenéticas habituales.

El FISH utiliza tintes fluorescentes especiales unidos a fragmentos de ADN que sólo se adhieren a partes específicas de determinados cromosomas. El FISH puede detectar alteraciones cromosómicas como las translocaciones, que son importantes para ayudar a clasificar algunos tipos de leucemia.

Microarrays de expresión génica:  Estos diminutos dispositivos son, en cierto modo, como chips informáticos. La ventaja de esta tecnología es que permite comparar al mismo tiempo los niveles relativos de cientos o incluso miles de ARN diferentes de una misma muestra. Los resultados indican qué genes están activos en un tumor. En ocasiones, esta información puede ayudar a predecir el pronóstico del paciente o su respuesta a determinados tratamientos.

Lista de tinciones citológicas

La tinción de Papanicolaou (también tinción de Papanicolaou y tinción de Papanicolaou) es una técnica de tinción citológica multicromática (multicolor) desarrollada por George Papanicolaou en 1942[1][2][3]. La tinción de Papanicolaou es una de las tinciones más utilizadas en citología,[1] donde se utiliza para ayudar a los patólogos a realizar un diagnóstico. Aunque destaca por su uso en la detección del cáncer de cuello uterino en la prueba de Papanicolaou, también se utiliza para teñir preparaciones de muestras no ginecológicas de diversas secreciones corporales y de pequeñas biopsias con aguja de órganos y tejidos[4][5] Papanicolaou publicó tres formulaciones de esta tinción en 1942, 1954 y 1960[2].

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La tinción de Papanicolaou se utiliza para diferenciar células en preparaciones de frotis (en las que las muestras se extienden o se untan en un portaobjetos de vidrio)[6] de diversas secreciones corporales y biopsias con aguja; las muestras pueden incluir frotis ginecológicos (frotis de Papanicolaou), esputo, cepillados, lavados, orina, líquido cefalorraquídeo,[4] líquido abdominal, líquido pleural, líquido sinovial, líquido seminal,[7] aspiraciones con aguja fina, muestras táctiles de tumores u otros materiales que contengan células sueltas. [8][4][9]

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